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原文
bioRxiv 预印本· Lyon, B. W., Russo, E., Colbert, C., Vega, S., Emmons, T., Kong, Y.-W., Sanders, A., Benoit, J., Gaudet, H., Yaffe, M. B., Sriram, G. ·· 12 小时前精选评分44

依托泊苷处理产生的活免疫原性黑色素瘤细胞上调B2M并丧失成瘤潜能

Live immunogenic melanoma cells generated by etoposide treatment upregulate B2M and lose tumor-forming potential

导读

依托泊苷处理的B16-Ova黑色素瘤细胞中,活细胞群体在药物洗脱后生长受阻但仍存活,软琼脂克隆形成实验显示其锚定非依赖性生长能力近乎完全丧失。处理后细胞上调B2M(Beta-2-microglobulin,Class I MHC亚基)的产生,但免疫荧光显示B2M主要在核周胞内聚集,细胞表面染色未增强,western blot仅显示Class I MHC表达边际上升。

深度解读

黑色素瘤免疫治疗的成败很大程度上取决于肿瘤细胞的抗原呈递和T细胞启动环节。B2M是MHC I类分子的关键亚基,其基因或蛋白改变会削弱抗原呈递,是免疫检查点抑制、肿瘤疫苗和CAR-T治疗耐药的重要机制[1];在未经治疗的转移性黑色素瘤中,43%(78/181例)的病例存在MHC I类分子膜表达的大部或完全缺失,与HLA-A/B/C及B2M的转录抑制相关,并预测对anti-CTLA-4的原发耐药[4]。另一方面,树突状细胞(DC)向引流淋巴结转运肿瘤抗原并启动CD8+ T细胞应答是抗肿瘤免疫的关键环节,小鼠CD103+(人CD141+)DC是介导这一过程的主要抗原呈递细胞[2,3]。而作为主要治疗手段数十年的细胞毒性化疗并不选择性杀伤癌细胞,同样会损伤构成宿主防御的免疫细胞,如何实现低毒的化疗—免疫联合一直缺乏清晰路径。

在此背景下,该团队此前报道,依托泊苷处理的表达卵白蛋白的B16黑色素瘤细胞(B16-Ova)与DC和T细胞体外共培养时可增强T细胞活化,且活细胞组分是必需的——死细胞单独或联合无细胞上清均无效。本研究进一步显示,这些依托泊苷处理后仍存活并保留T细胞刺激能力的细胞处于生长停滞状态,在药物洗脱后度过与DC、T细胞的共孵育期仍维持存活;软琼脂集落形成实验表明其集落形成能力急剧下降,锚定非依赖性生长近乎完全丧失。机制上,依托泊苷上调了B2M的生成:免疫荧光显示活细胞出现明显的核周B2M胞内积聚,而细胞表面B2M染色虽可检出却并未增强;细胞表达MHC I类蛋白,Western blotting也仅见药物处理带来的边缘性升高。

由此作者提出,活细胞驱动的T细胞活化可能并非依赖药物诱导的细胞表面MHC I类分子增多,而是指向其他机制。这将最直观的“表面MHC I上调”解释与实际观察区分开来,也为化疗后存活的肿瘤细胞赋予了新角色:近乎丧失成瘤潜力,却能刺激T细胞。这一方向与DC交叉呈递来自活B16细胞的抗原、并在小鼠治疗性方案中抑制黑色素瘤肺转移的既往工作相呼应[5]。

不过,该工作目前以预印本形式发表,证据主要来自体外共培养与软琼脂实验;核周B2M积聚意味着什么、真正的T细胞活化机制何在——例如活细胞抗原被DC摄取和呈递方式的差异[2,3]——以及该策略在体内的安全性与有效性,都仍有待回答。

来源:bioRxiv 预印本

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